– это бронхоскопический способ получения смыва с поверхности мельчайших бронхов (бронхиол) и альвеолярных структур легких для цитологического, микробиологического, биохимического и иммунологического исследований. Иногда применяется с лечебной целью для очистки воспаленных дыхательных путей от избыточного секреторного отделяемого гнойного содержимого.
В ветеринарной практике мы используем данный диагностический метод для проведения цитологического анализа полученного материала, а также для бактериологического исследования. Таким образом, в диагностику входит качественная/количественная оценка клеток, входящих в состав бронхиальной слизи (например, преобладает у пациента эозинофильное либо нейтрофильное воспаление). Также полученный материал высевается на питательные среды с целью определения, какой именно возбудитель колонизирует поверхность бронхов и титруется чувствительность найденного микроорганизма к антибиотикам.
Когда именно проводится исследование
Очень часто на прием к ветеринарному врачу приводят животных с хроническими кашлевыми приступами в анамнезе (появление симптомов отмечено более 1 месяца назад), периодически возникающим шумным дыханием, приступами удушья и так далее.
Интересно, что ни рентген грудной клетки, ни клинический анализ крови или взятие смывов с поверхности носовых ходов/конъюнктивы не могут помочь дифференцировать астму и бронхит кошек. Изменения на рентгенограмме грудной клетки неспецифичны: как правило, это однотипное усиление бронхиального либо бронхо-интерстициального рисунка. Что касается смывов с поверхности верхних дыхательных путей, то следует помнить, что микробный пейзаж на уровне бронхиол и слизистых носовых ходов очень разный, и при обнаружении микоплазмы на поверхности конъюнктивы глаза мы не имеем права утверждать, что данный возбудитель вызывает необратимые изменения на уровне бронхов.
Что касается собак, то диагностика хронического кашля также может осуществляться с помощью БАЛа. Так, кашель собак может быть симптомом очень разных заболеваний.Например, инфекционный и идиопатический бронхит дают одинаковые изменения при рентгенографии грудной клетки, однако требуют совершенно разного лечения. Очень ценен метод для подбора терапии при развитии у щенков и молодых собак тяжелых, рефрактерных (устойчивых) к лечению антибиотиками пневмоний. Ведь бактериологическое исследование позволяет точно определить, какой именно возбудитель устойчив к стандартной антибактериальной схеме. Также есть возможность точно и быстро подобрать необходимый и специфичный антибиотик.
Кроме того, с помощью метода мы можем исключить синдром эозинофильной инфильтрации лёгких, развивающий у молодых животных и требующий агрессивной стероидной терапии для купирования приступов, тогда как стероиды, назначенные при активном бактериальном процессе способны погубить пациента.
Как именно проводится исследование
Для забора смывов с поверхности бронхов мы используем метод бронхоскопии. Примерно до уровня бронхов 2-3 порядка вводится бронхоскоп, позволяющий исследовать поверхность бронхиального дерева, а также исключить возможные инородные предметы, попавшие в дыхательные пути, например, при активном беге. Далее с помощью бронхоскопа мы вводим небольшой объем стерильного раствора и очень быстро забираем его назад. Полученный материал исследуется под микроскопом и высевается на специальных средах.
Безопасность метода
Бронхоальвеолярный лаваж считается безопасным, очень эффективным в постановке диагноза и часто оказывающим лечебный эффект. Характерно исчезновение кашля на короткое время после проведения процедуры. Требует минимальной анестезии (седации). При проведении специфической подготовки не оказывает побочных эффектов.
Зачем нужно проводить данное исследование
Очень важно понимать, что хронический длительный прогрессирующий кашель часто говорит о развитии необратимых, тяжелых бронхо-легочных проблем, которые даже при грамотно подобранной терапии могут недостаточно хорошо ответить на лечение. Кошачья астма характеризуется высоким риском внезапного летального исхода. Так что своевременно поставленный диагноз и подобранная терапия позволяют избавить от проблем на ранней стадии и существенно улучшить качество жизни Вашего питомца.
Ветеринарный врач
Филимонова Д.М.
Лат. lavo мыть, промывать)
бронхоскопический способ получения смыва с поверхности мельчайших бронхов (бронхиол) и альвеолярных структур легких для цитологического, микробиологического, биохимического и иммунологического исследований. Л.б., являющийся диагностической процедурой, следует отличать от бронхиального лаважа - лечебного промывания крупных и мелких бронхов при различных заболеваниях (например, при гнойном бронхите, альвеолярном протеинозе, бронхиальной астме). Исследование бронхоальвеолярного смыва с помощью цитологических и иммунологических методов позволяет установить определенные изменения жизнеспособности клеток, их функциональной активности и соотношений между отдельными клеточными элементами, что дает возможность судить об этиологии и активности патологического процесса в легких. При заболеваниях, характеризующихся образованием специфических клеток и телец (например, злокачественные легких, гемосидероз, X), информативность цитологического исследования бронхоальвеолярных смывов может быть приравнена к информативности биопсии. При микробиологическом исследовании бронхоальвеолярных смывов могут быть выявлены возбудители туберкулеза, пневмоцистоза; при биохимическом - зависящие от природы заболевания и его активности изменения в содержании белков, липидов, диспропорции в соотношении их фракций, нарушения активности ферментов и их ингибиторов. Особенно информативно комплексное применение перечисленных методов исследования бронхоальвеолярных смывов. Наибольшее значение Л.б. имеет для диагностики диссеминированных процессов в легких; саркоидоза (при медиастинальной форме саркоидоза с отсутствием рентгенологических изменений и легких исследование бронхоальвеолярного смыва позволяет во многих случаях обнаружить легочной ткани); диссеминированного туберкулеза; метастатических опухолевых процессов; асбестоза; пневмоцистоза, экзогенного аллергического и идиопатического фиброзирующего альвеолитов; редких заболеваний (гистиоцитоза X, идиопатического гемосидероза, альвеолярного микролитиаза, альвеолярного протеиноза). Л. б. может успешно применяться для уточнения диагноза и при ограниченных патологических процессах в легких (например, злокачественных опухолях, туберкулезе), а также при хроническом бронхите и бронхиальной астме. Так как Л.б. проводится в ходе бронхоскопии (Бронхоскопия),
следует учитывать к ней. Риск исследования не должен превышать его необходимости для уточнения диагноза. Собственно Л.б. противопоказан при значительном количестве гнойного содержимого в бронхиальном дереве, определяемом как клинически, так и эндоскопически. Бронхоальвеолярный лаваж выполняют как при использовании жесткого бронхоскопа под общей анестезией, так и при фибробронхоскопии под местной анестезией, после визуального исследования трахеи и бронхов. Промывную жидкость вводят в выбранный сегментарный с последующей ее вакуум-аспирацией. Технически удобнее вливать жидкость в III (при положении больного лежа) и IV, V и IX сегменты (при положении сидя). При проведении Л.б. с использованием жесткого бронхоскопа (рис. 1
) через его вводят металлический направитель (под углом в 20° или 45° в зависимости от выбранного сегментарного бронха) и через него - рентгеноконтрастный № 7 или № 8, продвигая его вперед на 3-4 см
до бронхов 5-6-го порядка или как бы заклинивая их. Положение катетера можно контролировать на рентгенотелевизионном экране. Через катетер в выбранный сегмент легкого с помощью шприца порциями по 20 мл
вливают изотонический раствор хлорида натрия с рН 7,2-7,4 и температурой 38-40°. Объем промывной жидкости зависит от количества бронхоальвеолярного смыва, необходимого для проведения намеченных исследований. Применять менее 20 мл
промывающего раствора нецелесообразно, т.к. при этом не достигается адекватный смыв с бронхоальвеолярных структур. Как правило, общее количество раствора составляет 100-200 мл
. После введения каждой порции раствора проводят вакуум-аспирацию смыва с помощью электроотсоса в стерильную градуированную емкость. При фибробронхоскопии промывную жидкость вводят через фибробронхоскоп, установленный в устье выбранного сегментарного бронха, дозами по 50 мл
; аспирацию проводят через биопсийный канал фибробронхоскопа. Бронхоальвеолярный лаваж атравматичен, хорошо переносится, опасных для жизни осложнений при его проведении не отмечено. Примерно у 19% больных после Л.б. наблюдается в течение суток. В редких случаях развивается аспирационная . Полученный бронхоальвеолярный смыв необходимо быстро доставить в соответствующие лаборатории для проведения исследований. Если это невозможно, то допускается хранение смыва в течение нескольких часов в холодильнике при температуре от-6° до +6°; смыв, предназначенный для исследования неклеточных компонентов, может длительно находиться в замороженном состоянии. Для проведения цитологического исследования 10 мл
бронхоальвеолярного смыва сразу после его получения фильтруют через 4 слоя стерильной марли или мелкую сетку в центрифужную пробирку. Затем 10 капель профильтрованного смыва смешивают на часовом стекле с 1 каплей жидкости Самсона и заполняют счетную камеру. Подсчитывая клеточные элементы по всей камере, устанавливают их число в 1 мл
смыва. Клеточный состав бронхоальвеолярного смыва (эндопульмональная цитограмма) определяют при микроскопическом исследовании осадка лаважной жидкости, полученного при центрифугировании, на основании подсчета не менее 500 клеток с использованием иммерсионного объектива. При этом учитывают альвеолярные макрофаги, лимфоциты, нейтрофилы, эозинофилы, . Клетки бронхиального эпителия в связи с их незначительным количеством в смывах не подсчитывают. В бронхоальвеолярном смыве у здоровых некурящих лиц в среднем содержится 85-98% альвеолярных макрофагов, 7-12% лимфоцитов, 1-2% нейтрофилов и менее 1% эозинофилов и базофилов; общее количество клеток варьирует от 0,2․10 6 до 15,6․10 6 в 1 мл
. У курящих значительно увеличены общее количество клеток и процентное содержание лейкоцитов, альвеолярные макрофаги находятся в активированном (фагоцитирующем) состоянии, Изменения эндопульмональной цитограммы имеют определенную направленность в зависимости от этиологии и активности заболевания легких. Установлено, что умеренное повышение числа лимфоцитов (до 20%) с одновременным снижением количества альвеолярных макрофагов возможно при первичном туберкулезе органов дыхания (бронхоадените, милиарном туберкулезе легких) и острых формах вторичного туберкулеза легких (инфильтративном туберкулезе). У больных хроническими формами туберкулеза легких в бронхоальвеолярном смыве отмечается повышение количества нейтрофилов (до 20-40%) при сниженном или нормальном содержании лимфоцитов. При саркоидозе легких в бронхоальвеолярном смыве наблюдается значительное повышение уровня лимфоцитов (до 60-80% в активной фазе заболевания) при уменьшении содержания альвеолярных макрофагов. При хроническом течении и рецидиве заболевания также увеличивается число нейтрофилов. В случае обратного развития процесса на фоне глюкокортикостероидной терапии содержание лимфоцитов снижается, одновременно восстанавливается число альвеолярных макрофагов. Нарастание числа нейтрофилов прогностически неблагоприятно и свидетельствует о развитии пневмофиброза. При цитологическом исследовании бронхоальвеолярного смыва у больных экзогенным аллергическим альвеолитом устанавливают повышение числа лимфоцитов до 60% и более. Наиболее выраженный наблюдается в острой фазе заболевания и после проведения ингаляционного провокационного теста с аллергеном. Для идиопатического фиброзирующего альвеолита характерно увеличение содержания в бронхоальвеолярном смыве нейтрофилов (до 39-44%). При бронхиальной астме в бронхоальвеолярном смыве число эозинофилов достигает 30-80%, что является объективным диагностическим критерием аллергического воспаления слизистой оболочки бронхов. У больных хроническим бронхитом в бронхоальвеолярном смыве увеличено количество нейтрофилов, снижено содержание альвеолярных макрофагов, уровень лимфоцитов и эозинофилов сохраняется в пределах нормы. В фазе обострения хронического обструктивного и необструктивного бронхита в бронхоальвеолярном смыве повышается содержание нейтрофилов в среднем до 42%, а в фазе начинающейся ремиссии количество нейтрофилов снижается. У больных с обострением гнойного бронхита резко возрастает количество нейтрофилов (до 76%). уменьшается уровень альвеолярных макрофагов (до 16,8%). При злокачественных опухолях легких. гемосидерозе, гистиоцитозе X. асбестозе, ксантоматозе в бронхоальвеолярных смывах при цитологическом исследовании могут быть обнаружены специфичные для указанных заболеваний: комплексы опухолевых клеток (рис. 2
), гемосидерофаги (рис. 3
), гистиоциты, ксантомные клетки. Бактериологическое исследование бронхоальвеолярных смывов у больных туберкулезом легких позволяет получить микобактерий туберкулеза в 18-20% случаев. Микроскопически в бронхоальвеолярных смывах при окраске по методу Папаниколау и импрегнации серебром можно определить Pneumocystis carinii - возбудитель пневмонии у больных с иммунодефицитными состояниями. При биохимическом исследовании бронхоальвеолярных смывов у больных туберкулезом легких, саркоидозом легких, экзогенным аллергическим альвеолитом, хроническим бронхитом средние показатели активности протеаз (эластазы, коллагеназы) превышают норму. ингибиторов протеолиза (α 1 -антитрипсин) при этом резко снижается или отсутствует. Высокая эластазы сопутствует развитию дистрофических процессов в легких (эмфиземы и пневмосклероза). Исследование эластазы позволяет выявить начальные стадии развития этих процессов и своевременно провести . У больных туберкулезом легких и хроническим бронхитом в бронхоальвеолярных смывах обнаруживают снижение содержания фосфолипидов, составляющих основу поверхностно-активного слоя альвеолярной выстилки. При малых формах туберкулеза легких это может служить дополнительным тестом активности специфического процесса. Изучение других компонентов бронхоальвеолярных смывов, в т. ч. Т- и В-лимфоцитов, иммунных комплексов, проводится главным образом в научных целях. Библиогр.:
Авцын А.П. и др. Эндопульмональная цитограмма, Сов. мед., № 7, с. 8, 1982, библиогр., Герасин В.А. и др. Диагностический бронхоальвеолярный лаваж. Тер. ., № 5, с. 102, 1981, библиогр.; Диагностический бронхоальвеолярный лаваж, под ред. А Г. Хоменко. М., 1988, библиогр. окраска по Райту - Романовскому; ×1200"> Рис. 3. Микропрепарат бронхоальвеолярного смыва при гемосидерозе легких: стрелками указаны гемосидерофаги; окраска по Райту - Романовскому; ×1200. Рис. 1. Схема проведения бронхоальвеолярного лаважа с использованием жесткого бронхоскопа: 1 - корпус бронхоскопа; 2 - тубус бронхоскопа, введенный в правый главный бронх; 3 - направитель; 4 - рентгеноконтрастный катетер, установленный в устье переднего сегментарного бронха; 5 - пробирка для сбора бронхоальвеолярного смыва, соединенная трубкой (6) с электроотсосом для вакуум-аспирации; стрелками показано направление тока промывной жидкости. 1. Малая медицинская энциклопедия. - М.: Медицинская энциклопедия. 1991-96 гг. 2. Первая медицинская помощь. - М.: Большая Российская Энциклопедия. 1994 г. 3. Энциклопедический словарь медицинских терминов. - М.: Советская энциклопедия. - 1982-1984 гг
.
- Лаброци́т
Диагностические возможности бронхоальвеолярного лаважа
М.В. Самсонова
Внедрение в клиническую практику фибробронхоскопии и методики бронхоальвеолярного лаважа (БАЛ), позволяющей получить бронхиальные смывы (БС) и бронхоальвеолярные смывы (БАС), значительно расширило диагностические возможности в пульмонологии. Благодаря методике БАЛ стало возможным применение целого спектра цитологических, бактериологических, иммунологических, биохимических и биофизических методов. Эти исследования способствуют правильной диагностике онкологических заболеваний и диссеминированных процессов в легких, а также позволяют оценить активность воспалительного процесса в бронхоальвеолярном пространстве.
Методика БАЛ
БАЛ проводят при фибробронхо-скопии под местной или общей анестезией. Бронхоскоп вводится в долевой бронх (обычно средней доли правого легкого), бронхиальное дерево промывается большим количеством подогретого до 37°С физиологического раствора. После промывания раствор полностью аспирируют из бронхиального дерева.
Бронхоскоп вводят в устье сегментарного бронха, окклюзируя его. Через биопсийный канал бронхоскопа проводят полиэтиленовый катетер и через него в просвет сегментарного бронха вводят 50 мл физиологического раствора, который затем полностью аспирируют. Полученная порция жидкости представляет собой бронхиальный смыв. Затем катетер продвигают на 6-7 см вглубь сегментар-
Мария Викторовна Самсонова -
докт. мед. наук, зав. лаб. патологической анатомии НИИ пульмонологии Росздрава.
ного бронха и дробно вводят 4 порции по 50 мл физиологического раствора, которые каждый раз полностью аспи-рируют. Эти смешанные между собой порции и составляют бронхоальвеолярный смыв.
Методы исследования БС и БАС
Основные методы исследования БС и БАС включают биохимическое и иммунологическое исследование супернатанта, а также изучение клеточного осадка. При этом подсчитывают жизнеспособность клеток БС и БАС, цитограмму, проводят цитохимические исследования клеток, а также ци-тобактериоскопическую оценку. В последнее время разработана методика подсчета макрофагальной формулы БАС при различных заболеваниях бронхолегочной системы. Исследование БАЛ также позволяет оценить состояние сурфактантной системы легких с помощью измерения поверхностного натяжения и изучения фосфо-липидного состава сурфактанта.
Бронхиальную порцию БАЛ используют для проведения качественных и количественных микробиологических исследований. Помимо этого по изменениям клеточного состава БС можно определить выраженность воспалительной реакции в бронхиальном дереве.
бронхиальный эпителий 5-20%
в том числе
цилиндрический эпителий 4-15% плоский эпителий 1-5%
альвеолярные макрофаги 64-88% нейтрофилы 5-11%
лимфоциты 2-4%
тучные клетки 0-0,5%
эозинофилы 0-0,5%
Нормальная цитограмма альвеолярной порции БАЛ (рис. 1) приведена в табл. 1.
Диагностическое значение исследования БС и БАС
Наибольшее диагностическое значение исследование БС и БАС имеет для оценки степени воспаления в трахеобронхиальном дереве, при опухолях легкого и альвеолярном про-теинозе.
Цитологическое исследование БАС обладает высокой диагностической ценностью лишь при некоторых заболеваниях легких. К таким нозологиям относится гистиоцитоз Х, при котором появляются клетки Лангер-ганса (в их цитоплазме при электронной микроскопии определяются характерные Х-тельца, по иммунофенотипу - это СЭ1+-клетки). С помощью БАС возможно подтвердить наличие легочного кровотечения. Исследование БАС показано также при верификации альвеолярного протеино-за, для которого характерно наличие внеклеточного вещества (рис. 2), хорошо определяемого при помощи световой (ШИК-реакция) и электронной микроскопии. При этом заболевании БАЛ служит не только диагностической, но и терапевтической процедурой.
Рис. 1. Нормальный клеточный состав БАС. Окраска по Романовскому. х400.
При пневмокониозах с помощью исследования БАС возможно лишь подтвердить экспозицию к пылевому агенту. Специфическая диагностика бериллиоза может быть проведена при исследовании функциональной пролиферативной активности клеток БАС в ответ на действие солей бериллия. При асбестозе в БАС можно обнаружить асбестовые тельца (рис. 3) в виде характерных волокон - как вне-клеточно, так и внутриклеточно. Эти тельца представляют собой волокна асбеста с агрегированными на них ге-мосидерином, ферритином, гликопротеином, поэтому они хорошо окрашиваются при проведении ШИК-реакции и окраски по Перлсу. Крайне редко асбестовые тельца обнаруживаются у лиц, имевших непрофессиональный контакт с асбестом, при этом концентрация таких частиц в БАС не превышает 0,5 в 1 мл. В БАС также могут быть обнаружены псевдоасбестовые тельца - при пневмокониозах, связанных с воздействием пыли угля, алюминия, стекловолокон и др.
У больных с иммунодефицит-ными состояниями (в частности, ВИЧ-инфекцией) БАЛ является методом выбора для обнаружения возбудителей инфекционных поражений легких. Чувствительность БАЛ при диагностике пневмоцистной инфекции (рис. 4), по некоторым данным, превышает 95%.
При других заболеваниях исследование БАС не является высокоспецифичным, но может дать дополнительную информацию, которую оценивают в комплексе с клиническими, рентгенологическими, функциональными и лабораторными данными.
При диффузном альвеолярном кровотечении (ДАК), встречающемся при различных заболеваниях, в БАС могут быть обнаружены свободные и фагоцитированные эритроциты и си-дерофаги (рис. 5). БАС служит эффективным методом выявления ДАК даже при отсутствии кровохарканья, когда диагностика этого состояния крайне сложна. ДАК следует дифференцировать с острым респираторным дистресс-синдромом (ОРДС),
при котором в БАС также появляются сидерофаги.
В рамках дифференциальной диагностики идиопатического фиб-розирующего альвео-лита (ИФА) цитологическое исследование БАС позволяет исключить другие интерстициальные заболевания легких. Так, умеренное повышение доли нейтрофилов и эозино-филов в БАС не противоречит диагнозу ИФА. Значительное увеличение процента лимфоцитов и эозинофилов нехарактерно для ИФА, и в этих случаях следует задуматься о других альвео-литах (экзогенном аллергическом, лекарственных или профессиональных).
Цитологическое исследование БАС служит чувствительным методом в диагностике экзогенного аллергического альвеолита (ЭАА). Высокий процент лимфоцитов, наличие плазматических и тучных клеток, а также “пылевых” макрофагов в сочетании с анамнестическими и лабораторными данными позволяет диагностировать ЭАА. Возможно появление в БАС эози-
Таблица 1. Нормальная цитограмма БАС
Клеточный состав БАС Некурящие Курящие
Цитоз, число клеток х106/мл 0,1-0,3 >0,3
Альвеолярные макрофаги, % 82-98 94
Лимфоциты, % 7-12 5
Нейтрофилы, % 1-2 0,8
Эозинофилы, % <1 0,6
Тучные клетки, % <1 <1
Рис. 2. Внеклеточное вещество в БАС при альвеолярном протеинозе. Окраска по Романовскому. х400.
нофилов или гигантских многоядерных клеток (рис. 6). Среди лимфоцитов преобладают клетки с иммунофенотипом С03+/С08+/С057+/С016-. Следует помнить, что спустя несколько месяцев от начала заболевания наряду с Т-супрессорами начинает увеличиваться число Т-хелперов. Дополнительные методы исследования позволяют исключить другие заболевания, при которых имеет место повышение доли лимфоцитов в БАС, - диффузные болезни соединительной ткани, лекарственные альвеолиты (ЛА), обли-терирующий бронхиолит с организующейся пневмонией (ОБОП), силикоз.
При саркоидозе также отмечается повышение доли лимфоцитов в БАС, причем для саркоидоза характерно со-
Рис. 4. Pneumocystis jiroveci в БАС. Окраска по Романовскому. x400.
Рис. 5. Сидерофаги в БАС. Окраска по Перлсу. x100.
www.atmosphere-ph.ru
Рис. 6. ЭАА: повышение доли эози-нофилов, нейтрофилов, лимфоцитов в БАС, гигантская многоядерная клетка. Окраска по Романовскому. х200.
Рис. 7. “Амиодароновое легкое” (ЛА): макрофаги с пенистой цитоплазмой в БАС. Окраска по Романовскому. х1000, масляная иммерсия.
Рис. 8. Лимфоцитарный тип цитограммы БАС. Окраска по Романовскому. х1000, масляная иммерсия.
отношение Т-хелперов и Т-супрессо-ров (С04+/СЭ8+) выше 3,5 (чувствительность этого признака составляет 55-95%, специфичность - до 88%). В БАС у больных саркоидозом могут быть также обнаружены гигантские многоядерные клетки (типа клеток инородного тела).
Рис. 9. Нейтрофильный тип цитограммы БАС. Окраска по Романовскому. х1000, масляная иммерсия.
При лекарственных альвеоли-
тах морфологические изменения в легких могут быть разнообразными, часто наблюдают альвеолярный геморрагический синдром или ОБОП. В цитограмме БАС может отмечаться увеличение доли эозинофилов, нейт-рофилов, но чаще всего при ЛА опи-
Таблица 2. Примеры применения цитологического анализа БАС для дифференциальной диагностики (по данным ОгеП М. е1 а1., 2000)
Показатели цитограммы
БАС и их оценка
Клинические примеры цитограммы БАС
Цитоз, х104/мл 29 110 100 20 64
Макрофаги, % 65,8 18,2 19,6 65,7 41,0
Лимфоциты, % 33,2 61,6 51,0 14,8 12,2
Нейтрофилы, % 0,6 12,8 22,2 12,4 4,2
Эозинофилы, % 0,2 6,2 7,0 6,8 42,2
Тучные клетки, % 0,2 1,0 0,2 0,3 0,4
Плазмоциты, % 0 0,2 0 0 0
Отношение СО4+/СО8+ 3,6 1,8 1,9 2,8 0,8
Бактериальный посев - - - - -
Наиболее вероятный диагноз Саркоидоз ЭАА ЛА ИФА ОЭП
Вероятность правильности диагноза*, % 99,9 99,6 98,1 94,3 Не вычислялась
* Вычислялась с помощью математической модели. Обозначения: ОЭП - острая эозинофильная пневмония.
сывают повышение процента лимфоцитов, среди которых, как правило, преобладают СЭ8+-клетки. Очень высокое содержание нейтрофилов в БАС встречается при приеме антидепрессанта номифензина (доля нейтрофи-лов может достигать 80% с последующим ее снижением и одновременным нарастанием числа лимфоцитов). При амиодароновом ЛА (“амиодароновое легкое”) происходят специфические изменения БАС в виде появления большого числа “пенистых” макрофагов (рис. 7). Это весьма чувствительный, но малоспецифичный признак: такие же макрофаги могут быть обнаружены и при других заболеваниях (ЭАА, ОБОП), а также у принимающих амиодарон пациентов в отсутствие альвеолита (амиодарон повышает содержание фосфолипидов, особенно в фагоцитах).
В остальных случаях, когда БАЛ не выявляет высокоспецифичных признаков какого-либо заболевания, этот метод позволяет ограничить дифференциально-диагностический поиск (табл. 2 и 3) рамками определенной группы нозологических единиц с тем или иным типом аль-веолита:
Лимфоцитарным (увеличение доли лимфоцитов, рис. 8): саркоидоз, гиперчувствительный пневмонит, пострадиационная пневмония, ИФА, хронический инфекционный процесс в легких, СПИД, силикоз, синдром Шегрена, болезнь Крона, канцероматоз, лекарственные пневмопатии;
Нейтрофильным (увеличение доли нейтрофилов, рис. 9): склеродермия, дерматомиозит, острый инфекционный процесс в легких, сар-коидоз при злокачественном течении, асбестоз, лекарственный аль-веолит;
Эозинофильным (увеличение доли эозинофилов, рис. 10): ангиит Чер-джа-Стросс, эозинофильная пневмония, лекарственный альвеолит;
Смешанным (рис. 11): туберкулез. гистиоцитоз.
При диагностике рака легкого метод БАЛ обладает преимуществом
Таблица 3. Цитологические показатели БАС в норме и их изменения при различных патологиях (по данным ОгеП М. е1 а!., 2000)
Альвеолярные макрофаги Лимфо- циты Нейтро- филы Эозино- филы Плазмо- циты Тучные клетки Отношение CD4+/CD8+
Нормальные значения
Некурящие 9,5-10,5* 0,7-1,5* 0,05-0,25* 0,02-0,08* 0* 0,01-0,02* 2,2-2,8
85-95% 7,5-12,5% 1,0-2,0% 0,2-0,5% 0% 0,02-0,09%
Курильщики 25-42* 0,8-1,8* 0,25-0,95* 0,10-0,35* 0* 0,10-0,35* 0,7-1,8
90-95% 3,5-7,5% 1,0-2,5% 0,3-0,8% 0% 0,02-1,0%
Неинфекц ионные бол езни
Саркоидоз Т = =/Т - =/Т Т/=/4
ЭАА “Пенистые” МФ ТТ Т =/Т +/- ТТ 4/=
Лекарственный “Пенистые” МФ ТТ Т Т +/- ТТ 4/=
альвеолит
ИФА Т Т/ТТ Т - Т =
ОБОП “Пенистые” МФ Т Т Т -/+ =/Т 4
Эозинофильная Т = ТТ +/- =/Т 4
пневмония
Альвеолярный “Пенистые” МФ Т = = - Н.д. Т/=
протеиноз
Болезни соедини- Т =/Т =/Т - =/Т Т/=/4
тельной ткани
Пневмокониозы ВКВ (частицы) Т Т =/Т - =/Т Т/=/4
Диффузное альвео- Окраска =/Т Т =/Т - Н.д. =
лярное кровотечение на Fe: +++
ОРДС Окраска на Fe: + Т ТТ Т - =/Т 4/=
Злокачественные опухоли
Аденокарцинома = = = - = =
Раковый лимфангиит Т Т/= Т/= -/+ Т/= 4/=
Гемобластозы Т Т Т -/+ Т 4/=
И нфекции
Бактериальные ВКВ (бактерии) = ТТ Т - Н.д. =
Вирусные ВКВ Т Т Т - Н.д. Т/=
Туберкулез ВКВ (микобактерии) Т = Т - Т =
ВИЧ ВКВ Т Т Т/= - Н.д. 4
Обозначения: МФ - макрофаги, ВКВ - внутриклеточные включения; показатель: Т - повышен; ТТ - значительно повышен; 4 -понижен; =/Т - не изменен, реже повышен; Т/=/4 - может быть повышен, понижен или не изменен; Т/ТТ - повышен, реже значительно повышен; Т/= - повышен, реже не изменен; 4/= - понижен, реже не изменен; = - не изменен; - нет; -/+ - встречаются редко; +/- встречаются; Н.д. - нет данных.
* Данные представлены в абсолютных числах х104мл-1.
перед исследованием мокроты в отношении выявления опухолевых клеток, так как материал может быть по-
лучен из той доли или сегмента, где локализуется опухоль. БАЛ дает возможность с большей вероятностью
диагностировать периферические опухоли, включая и бронхиолоальвеолярный рак (рис. 12).
Рис. 10. Эозинофильный тип цитограммы БАС, кристаллы Шар-ко-Лейдена. Окраска по Романовскому. х200.
Рис. 11. Смешанный тип цитограммы БАС: повышение доли лимфоцитов, нейтрофилов, эозинофи-лов. Окраска по Романовскому. х1000, масляная иммерсия.
Рис. 13. БАС при хроническом бронхите: наличие цилиндрических реснитчатых клеток, нейтрофилов, скопление кокковой флоры. Окраска по Романовскому. х1000, масляная иммерсия.
Рис. 14. Микобактерии туберкулеза в БАС. Окраска по Цилю-Ниль-сену. х1000, масляная иммерсия.
Рис. 15. Псевдомицелий гриба Candida albicans в БАС. Окраска по Романовскому. х200.
Цитобактериоскопический метод позволяет выявить и полуколиче-ственно оценить содержание в БАС бактерий (рис. 13), микобактерий (рис. 14) и грибов (рис. 15). Эти результаты (бактерии могут быть дифференцированы по Граму) служат основой для назначения соответствующей антибактериальной терапии до получения результатов бактериологического исследования. В казуистиче-
Рис. 16. Значительное повышение числа нейтрофилов в БАС, многочисленные простейшие типа амеб. Окраска по Романовскому. х200.
Исследование БАС позволяет оценить степень активности воспалительного процесса при инфекционных заболеваниях и эффективность проводимой терапии. Низкая степень активности воспаления характеризуется увеличением в БАС доли нейтрофилов в пределах 10%,
средняя - до 11-30%, высокая - более 30%.
Использование гистохимических методов изучения клеток БАЛ возможно при их высокой жизнеспособности (более 80%).
Заключение
При оценке выявленных в БС и БАС изменений следует придерживаться определенных правил и помнить о следующем:
Выявленные изменения характерны только для исследуемого сегмента, поэтому к ним надо относиться осторожно, если процесс не носит диффузный характер;
Выявленные изменения характерны для данного момента времени;
Поскольку легкие испытывают на себе воздействие одновременно многих факторов (курение, поллютанты и др.), необходимо всегда исключать возможность влияния этих факторов на развитие легочной патологии.
Черняев А.Л., Самсонова М.В. Патологическая анатомия легких: Атлас / Под ред. Чучалина А.Г. М., 2004.
Шапиро Н.А. Цитологическая диагностика заболеваний легких: Цветной атлас. Т. 2. М., 2005.
Baughman R.P Bronchoalveolar Lavage. St. Louis, 1992.
Costabel U. Atlas of Bronchoalveolar Lavage. L., 1998.
Drent M. et al. // Eur. Resp. Monograph. V 5. Mon. 14. Huddersfield, 2000. P. 63.
Книги Издательского дома “АТМОСФЕ
Амелина Е.Л. и др. Мукоактивная терапия /
Под ред. А.Г. Чучалина, А.С. Белевского
В монографии суммированы современные представления о строении и функционировании мукоцилиарного клиренса, его нарушениях при различных заболеваниях органов дыхания, методах исследования; рассматриваются основные лекарственные и нелекарственные способы коррекции мукоцилиарного клиренса при бронхолегочной патологии. 128 с., ил.
Для врачей широкого профиля, терапевтов, пульмонологов, студентов медицинских вузов.
Лаваж бронхоальвеолярный диагностический - метод исследования, обеспечивающий получение клеточных элементов, белковых и других веществ с поверхности мельчайших бронхов и альвеол путем заполнения субсегмента легкого изотоническим раствором с последующей его аспирацией. Диагностический субсегментарный бронхоальвеолярный лаваж обычно производится во время бронхофиброскопии под местной анестезией после подведения бронхофиброскопа к устью субсегментарного бронха. Через канал бронхофиброскопа в субсегментарный бронх инстиллируется 50-60 мл изотонического раствора. Поступающую из просвета бронха жидкость, являющуюся бронхо-альвеолярным смывом, аспирируют через канал бронхофиброскопа в полиэтиленовый стаканчик. Инстилляцию и аспирацию повторяют 2-3 раза. В аспирированной жидкости, очищенной от слизи путем фильтрования через марлю, исследуются клеточный и белковый состав, функциональная активность альвеолярных макрофагов. Для изучения клеточного состава бронхоальвеолярный смыв центрифугируется. Из осадка изготавливаются мазки, которые окрашиваются гематоксилин-эозином или по Романовскому. Диагностический бронхоальвеолярный лаваж чаще применяется для определения активности диссеминированных процессов в легком. Признаком высокой активности идиопатического фиброзирующего альвеолита является значительное увеличение в бронхоальвеолярном смыве числа нейтрофилов, а при саркоидозе и экзогенном аллергическом альвеолите - возрастание числа лимфоцитов.
ЛАВАЖ БРОНХОАЛЬВЕОЛЯРНЫЙ ЛЕЧЕБНЫЙ
Способ лечения заболеваний легких, основанный на эндобронхиальном введении большого количества изотонического раствора и вымывании сгустков слизи, белкового и другого содержимого мелких бронхов и альвеол. Лечебный бронхоальвеолярный лаваж может быть выполнен через бронхоскоп или двухпросветную интубационную трубку. Процедура обычно производится под наркозом. Искусственная вентиляция легких при этом осуществляется инжекционным способом. Изотонический раствор последовательно инстиллируется в каждый долевой или сегментарный бронх через управляемый катетер и сразу же аспирируется вместе с вымываемым вязким секретом и сгустками слизи. Бронхоскопическая методика чаще применяется у больных бронхиальной астмой в астматическом статусе. Для промывания бронхов используется 500-1500 мл изотонического раствора. Аспирировать обычно удается около 1 / 3 - 1 / 2 введенного объема жидкости. Показания к лечебному бронхоальвеолярному лаважу у больных бронхиальной астмой возникают редко, так как комплекс других лечебных мероприятий обычно позволяет купировать астматический статус.
Лечебный бронхоальвеолярный лаваж через двухпросветную интубационную трубку проводится при однолегочной искусственной вентиляции. В просвет интубационной трубки в главный бронх проводится катетер, через который осуществляются инстилляция и аспирация изотонического раствора. Одномоментно в легкое вводится 1000-1500 мл раствора, обратно аспирируется 90-95 % объема вводимой жидкости. Процедура повторяется несколько раз. Общий объем вводимой жидкости варьирует от 3-5 до 40 л. Тотальный бронхоальвеолярный лаваж через двухпросветную интубационную трубку является наиболее эффективным способом лечения идиопатического альвеолярного протеиноза.
Справочник по пульмонологии / Под ред. Н. В. Путова, Г. Б. Федосеева, А. Г. Хоменко.- Л.: Медицина
– диагностическая процедура, суть которой – введение в бронхи, легкие животного стерильного раствора, в его дальнейшем удалении, а также исследовании клеток полученного образца, определения чувствительность микроорганизма к антибиотикам.
Для проведения диагностики применяется бронхоскоп, что позволяет врачу получить возможность детально оценить дыхательные пути и взять анализ из поврежденного участка.
БАЛ является терапевтической процедурой. У многих домашних питомцев после процедуры дыхательная функция значительно улучшается.
Бронхоскопия вместе с забором смывов в ветеринарной практике применяется часто. Бронхоскопия дает возможность установить степень воспаления, бронхоэктазию, коллабирование дыхательных путей, опухолевое поражение. Забор смывов – оценить характер воспаления по клеточному составу жидкости, провести микробиологическое исследование с целью обнаружить возбудителя.
Особенности диагностики, показания, симптомы: эффективность метода
Забор жидкости выполняется из бронхов, бронхиол, альвеол пациента. В результате врач получает детальную информацию о работе бронхов и легких.
Большая часть заболеваний нижних дыхательных путей обладает схожей симптоматикой. Исключительно по данным физикального обследования (осмотр животного, прослушивание легких) ветеринар не может установить точный диагноз. Тогда, как рентгенография легких способна выявить воспаление бронхов, степень поражения. Однако природу патологического процесса установить благодаря ей не представляется возможным.
БАЛ позволяет разграничить аллергическую, инфекционную, опухолевую проблемы. Этот метод достаточно информативен, если наблюдается длительный инфекционный бронхит, так как позволяет оперативно подобрать подходящий препарат, максимально эффективно воздействующий на возбудителя.
Бронхоальвеолярный лаваж у собак и иных животных выполняют с помощью жесткого бронхоскопа при общей анестезии.
Заболевания, при которых необходима представленная диагностика:
Основные симптомы при воспалении дыхательных путей, коллапсе:
- Хронический непродуктивный кашель;
- Одышка;
- Удушье;
- Цианоз слизистых;
- Непереносимость нагрузок;
- Вялость.
Техника проведения БАЛ: точность диагностики
Исследование выполняют под общей анестезией. Процесс занимает немного времени (около 10 минут). Процедура абсолютно безболезненная, хотя некоторые домашние питомцы могут после забора смывов испытывать дискомфорт. После БАЛ клиническая картина заболевания становится лучше (дыхание улучшается, интенсивность кашля снижается).
Из расчета 0,5 мл на 1 кг веса животного заливается стерильный раствор. Затем быстро аспирируется назад. Хороший результат – получение обратно 50% объема. Оставшаяся часть всасывается слизистой дыхательных путей.
Около 15 минут после процедуры выполняется тщательный мониторинг домашнего питомца на предмет респираторного дистресса, цианоза слизистых. Животное быстро приходит в норму и возвращается хозяину в этот же день.
Результаты микробиологического и цитологического исследований готовятся до 7 рабочих дней. Таким образом, БАЛ – информативное исследованием, позволяющее точно поставить диагноз, а также быстро подобрать лечение для вашего питомца.
Необходимость и безопасность БАЛ: профессиональный подход ветеринаров клиники «Высота»
Важно понимать, длительный хронический прогрессирующий кашель может свидетельствовать о развитии тяжелых бронхолегочных заболеваний, которые лечить достаточно сложно.
Например, кошачья астма отличается высоким риском летального исхода. Поэтому бронхоальвеолярный лаваж у кошек позволит своевременно и точно поставить диагноз, а также подобрать терапию, которая позволит на ранней стадии решить проблему и улучшить качество жизни домашнего питомца.
БАЛ считается безопасным и эффективным в установлении диагноза методом. Он оказывает лечебный эффект. После процедуры характерно на короткое время исчезновение кашля. Требует минимальной анестезии. При проведении подготовки не имеет побочных эффектов.